eRapport

Targeting the glutamine shuttle to regulate synaptic plasticity, ontogeny and pathology

Prosjekt
Prosjektnummer
2017052
Ansvarlig person
Farrukh Abbas Chaudhry
Institusjon
Oslo universitetssykehus HF
Prosjektkategori
Postdoktorstipend
Helsekategori
Eye, Neurological
Forskningsaktivitet
1. Underpinning, 2. Aetiology
Rapporter
2021 - sluttrapport
Signalstoff Glutamat og GABA er det mest utbredte henholdsvis stimulerende og hemmende signalstoff i hjernen og retina og som opprettholder mange av våre hjernefunksjoner og synssansen. Glutamin antas å være den viktigste forløperen for begge, men hvordan glutamin tilføres nerveceller har vært ukjent. Oppdagelsen av en familie med glutamintransportører Vi identifiserte en familie av cellemembran-proteiner (såkalte transportører) som transporterer glutamin gjennom cellemembranen (Cell 1999). SN1 og SN2 anrikes på overflaten av Müller- og astrogliaceller og frigjør glutamin, mens SAT1 og SAT2 transporterer glutamin inn i henholdsvis GABAerge og glutamaterge nerveceller. SN1 er spesielt interessant fordi den kan transportere glutamin begge veier samtidig som den har en iboende kanal som tillater ione-flukser. SN1 bidrar derfor ikke bare til signalstoffdannelse, men påvirker også cellemembranpotensialer, aktiverer enzymer og regulerer metabolske prosesser med mer. Vi ønsket derfor å studere hvordan SN1 blir regulert, hvordan slik regulering påvirker signalstoff-resirkulering og synaptisk plastisitet og bidrar til patofysiologi. SN1 dysfunksjon er assosiert med patologi Leversykdom er nest vanligste årsak til tapte arbeidsår i Europa og en hyppig dødsårsak i USA. Leversykdom gjør at ammonia (toksisk endepunkt av proteinkatabolisme) ikke detoksifiseres i leveren, men i stedet akkumuleres i hjernen og retina. Det resulterer i at pasientene blir forvirret, synet svekkes, hjernen sveller og i siste instans kan de dø. Men det har vært uvisst hvordan ammonia fører til encefalopati og retinopati. Vi har nå demonstrert at ammonia binder seg til og nedregulerer SN1 (og SN2) i astrogliaceller og retinale Müller celler og forhindrer at SN1 frigjør glutamin. Dermed hopes glutamin i gliaceller mens synaptisk transmisjon reduseres i nerveceller. Dette resulterer henholdsvis i ødemdannelse og forstyrret nervecellesignalering – to sentrale kjennetegn ved hepatisk encefalopati og retinopati. Dette bekreftes av at inaktivering av SN1 i mus fører til patologi forenlig med lever encefalopati. Til slutt undersøkte vi en musemodell for hepatisk encefalopati og retinopati. Den viser signifikant reduksjon i SN1, mens SAT2 ikke ble påvirket. Disse dataene stadfester derfor en sentral rolle for SN1 ved utvikling av hepatisk encefalopati og retinopati (Hamdani et al., FASEB J, 2021). SN1 regulering Yeast two-hybrid screening ved bruk av SN1 N-terminal aminosyresekvens som agn identifiserte et interagerende protein (P1). Ko-immunpresipiteringsforsøk under fysiologiske betingelser i forskjellige transfekterte mammalske cellelinjer (slik som CHO, HEK293T og HepG2) og primære kortikale cellekulturer bekrefter slik interaksjon. Det motsatte skjer også: når P1 blir brukt som agn presipiteres SN1. Dette er ytterligere bekreftet ved bruk av Proximity Ligation Assays: et immunofluorescence merkingssystem basert på sekundære antistoff koblet til nukleotider som blir amplifisert dersom to proteiner er i umiddelbar nærhet, det vil si interagerer med hverandre. Det mest interessante er at når vi bruker P1 som agn, isolerer vi ikke bare SN1, men også flere andre membranproteiner. Dette tyder på at det finnes proteinkonglomerater som fin-regulerer SN1 for optimal funksjon i hjernen og retina. Til slutt har vi injisert in vitro transkribert mRNA for SN1 og P1 i Xenopus laevis oocytter for å vise mekanistisk hvordan P1-SN1 interaksjonen regulerer SN1 transport og ekspresjon. Dette vil avsløre hvordan SN1 regulerer signalstoffdannelse og synaptisk plastisitet og hvordan dysfunksjon kan bidra til patologi (MS in prep). Vi har derfor delvis oppnådd våre del-/hovedmål om å demonstrere hvordan glutamintransportører regulerer signalstoffdannelse og bidrar til synaptisk plastisitet og patologi. Dette arbeidet gir også innsikt i patofysiologi og avslører potensielle terapeutiske mål. Dette prosjektet har gitt innsikt i molekylære mekanismer involvert i SN1 funksjon og patofysiologi og avslører potensielle terapeutiske mål. Vårt mål er å translatere disse funnene. Spesielt vil vi se på muligheten for hensiktsmessige endringer i behandling av pasienter med f.eks. hepatisk encefalopati eller hepatisk retinopati. Vi vil teste muligheten for innovering av medikamenter som kan regulere SN1 funksjon.

NEI

2020
SN1 er en glutamintransportør som frigjør glutamin fra astrogliaceller for syntese av signalstoffene glutamat og GABA i nerveceller. Vi har nå identifisert proteiner og ioner som interagerer med SN1 og hemmer SN1-mediert glutaminfrigjøring som igjen reduserer syntese av signalstoffer, endrer hjernefunksjoner og bidrar til hjernepatologi.Glutamat og GABA er det mest utbredte henholdsvis stimulerende og hemmende signalstoff i sentralnervesystemet. De utskilles fra nerveceller og aktiverer sine respektive reseptorer og utøver dermed en påvirkning på naboceller eller seg selv. Slik nervecellesignalering danner grunnlaget for våre hjernefunksjoner. Vi har identifisert en familie av glutamintransportører som bidrar til transport av glutamin fra en celle til en annen. SN1 og SN2 anrikes på astrogliaceller og frigjør glutamin, mens GABAerge og glutamaterge celler har henholdsvis SAT1 og SAT2 på sine celleoverflater som transporterer glutamin inn til nervecellene. SN1 er spesielt interessant fordi den kan transportere glutamin begge veier og inneholder også en kanal som tillater lekkasje av protoner. På den måten kan både glutamin og protoner endre cellemembranpotensialer, aktivere enzymer og regulere metabolske prosesser og dermed påvirke en rekke funksjoner i hjernen. Vi har utført yeast two-hybrid (Y2H) screening ved å bruke N-terminalen til SN1 som agn og identifisert et protein (P1) som interagerer med SN1 N-terminal. Vi har så vist ved ko-immunpresipiteringsforsøk at SN1 og P1 interagerer under fysiologiske betingelser i forskjellige mammalske cellelinjer (slik som Chinese Hamster Ovary (CHO)-, Human Embryonic Kidney (HEK293T)- og human liver cancer cells (HepG2)) hvor SN1 og P1 er transfektert inn. SN1-P1 Interaksjonen er også vist med endogent uttrykende proteiner i primære kortikale cellekulturer fra musehjerner. Slik interaksjon er bekreftet ved Proximity Ligation Assays: et immunofluorescence merkingssystem basert på sekundære antistoff koblet til nukleotider som blir amplifisert dersom proteinene er i umiddelbar nærhet, det vil si interagerer med hverandre. Vi gjorde så omvendt ko-immunpresipitering ved å bruke P1 som agn og islolerte både SN1 og flere andre proteiner. Disse proteiner synes å lage et konglomerat som bidrar til regulert frigjøring av glutamin fra astrogliaceller. Til slutt har vi injisert in vitro transkribert mRNA for SN1 og P1 i Xenopus laevis oocytter for å vise mekanistisk hvordan P1-SN1 interaksjonen regulerer glutamintransport og hvordan det kan påvirke synaptisk plastisitet. Dette arbeidet er planlagt ferdigstilt i år. Vi har nå også demonstrert hvordan ioner kan forstyrre SN1 og dermed resirkulering av signalstoff som fører til utvikling av hepatisk encephalopati (HE): Vi har påvist at ammonia interagerer og nedregulerer selektivt SN1 funksjon. Dette fører til typisk patologi for HE med ødemdannelse i astrogliaceller og forstyrret signalstoff-frigjøring fra nerveceller. Disse mekanismene har vi så fått bekreftet i musemodeller for HE (manuskript er resumitted).

Nei

2019
SN1 og SAT1 er glutamintransportører som henholdsvis frigjør glutamin fra astrogliaceller og transporterer det inn i nerveceller. Vi viser nå at et annet protein interagerer og regulerer SN1 aktivitet og at SAT1 bidrar til GABA syntese. Dysfunksjon i disse proteiner svekker synaptisk plastisitet, våre hjernefunksjoner og bidrar til hjernepatologi.Glutamat og GABA er det viktigste henholdsvis stimulerende og hemmende signalstoff i sentralnervesystemet. De utskilles fra nerveceller og aktiverer sine respektive reseptorer og utøver dermed en påvirkning på naboceller eller seg selv. Slik nervecellesignalering danner grunnlaget for våre hjernefunksjoner. Vi har identifisert en familie av glutamintransportører som bidrar til transport av glutamin fra en celle til en annen. SN1 og SN2 anrikes på astrogliaceller og frigjør glutamin, mens GABAerge og glutamaterge celler har henholdsvis SAT1 og SAT2 på sine celleoverflater som transporterer glutamin inn til nervecellene. SN1 er spesielt interessant fordi den kan transportere glutamin begge veier og inneholder også en kanal som tillater lekkasje av protoner. På den måten kan både glutamin og protoner endre cellemembranpotensialer, aktivere enzymer og regulere metabolske prosesser og dermed påvirke en rekke funksjoner i hjernen. Vi har utført en yeast two-hybrid (Y2H) screening ved å bruke N-terminalen til SN1 som agn og identifisert et protein som interagerer med SN1. For å teste om denne interaksjonen finner sted også under fysiologiske betingelser, har vi anvendt forskjellige mammalske cellelinjer (CHO, HEK293T og HepG2) og primære kortikale cellekulturer fra musehjerne som enten endogent uttrykker SN1 og det nye proteinet eller som ble transfektert for disse og dernest utført immunpresipiteringsforsøk. Våre immunpresipiteringsdata viser med all tydelighet at det er en interaksjon mellom disse proteinene under fysiologiske betingelser. Dette er også blitt bekreftet ved Proximity Ligation Assays: et immunofluorescence merkingssystem basert på sekundære antistoff koblet til nukleotider som blir amplifisert dersom proteinene er i umiddelbar nærhet, det vil si interagerer med hverandre. Til slutt har vi injisert in vitro transkribert mRNA for SN1 og det nye proteinet i Xenopus laevis oocytter og demonstrert ved opptaksmålinger at det nye proteinet hemmer SN1-medisert glutaminfrigjøring. Vi har tidligere vist at SAT1 blir selektivt nedregulert av β-amyloid. Vi har nå vist at SAT1 er essensiell for GABA syntese i GABAerge nevroner og en nedregulering av SAT1 fører til endret presynaptisk plastisitet. Våre data tilsier at SAT1 kan være av stor betydning for utvikling av demens og andre patologiske tilstander som epilepsi og angst. Begge disse studiene gir ny og viktig innsikt i hjernens oppbygning og funksjoner og er forventet avsluttet i løpet av inneværende år. Studiene avslører også proteinenes potensielle rolle i demensutvikling og annen patologi og viser at SN1, SAT1 og/eller det nye proteinet kan potensielt være egnede mål for fremtidig terapi.

Nei

2018
SN1 er en glutamintransportør som frigjør glutamin fra astrogliaceller. Glutaminet tas dernest opp av nerveceller og brukes til å syntetisere signalstoffene glutamat og GABA. Vi undersøker hvorvidt andre astrogliale proteiner interagerer med SN1 og regulerer dets funksjon og om dette påvirker nervecellesignalering og utvikling av hjernesykdommer.Glutamat og GABA er det viktigste henholdsvis stimulerende og hemmende signalstoff i sentralnervesystemet. De utskilles fra nerveceller og aktiverer sine respektive reseptorer og utøver dermed en påvirkning på naboceller eller seg selv. Slik nervecellesignalering danner grunnlaget for våre hjernefunksjoner. Vi har identifisert en familie av glutamintransportører som bidrar til transport av glutamin fra en celle til en annen. SN1 og SN2 anrikes på astrogliaceller og frigjør glutamin. GABAerge og glutamaterge celler har henholdsvis SAT1 og SAT2 på sine celleoverflater som transporterer glutamin inn til nervecellene. SN1 er spesielt interessant fordi den kan transportere glutamin begge veier og inneholder også en kanal som tillater lekkasje av protoner. Både glutamin og protoner kan aktivere mange enzymer og har innvirkning på en rekke metabolske prosesser. Tidligere har vi vist at protein kinase C (PKC) α og PKCγ fosforylerer SN1 på et serin i 52-posisjon og at dette fører til internalisering av transportøren slik at den ikke lenger er aktiv. Vi har utført en yeast two-hybrid (Y2H) screening ved å bruke SN1 som agn og identifisert to proteiner som interagerer med SN1. Begge proteinene er anriket i astrogliaceller og forekommer både på plasmamembranen og i cytosol. Det er derfor mulig at disse to proteinene interagerer med SN1 og regulerer dets funksjon. Samtidig er det en stor sjanse for å få både falskt positive (dersom cellene inneholder store mengder av disse proteinene) og falskt negative (dersom protein-kompleksene ikke blir bevart under forsøk) resultater. Vi har derfor utført immunpresipiterings forsøk i flere forskjellige cellelinjer (CHO, HEK293T og HepG2), som enten har endogent uttrykk av disse proteinene eller som blir transfektert med dem, og brukt SN1 som agn for å trekke ut interagerende proteiner. For best mulig å bevare protein-kompleksene har vi testet flere cellelyseringsbuffere, spesielt de som er milde og som inneholder ulike ikke-ioniske oppløsningmidler. Ko-immunopresipiteringsforsøk med SN1 viser at SN1 interagerer med «protein A». Men vi har foreløpig ikke klart å vise det motsatte nemlig å bruke protein A som agn og trekke ut SN1. For «protein B» er ikke interaksjonen blitt endelig påvist. Vi prøver derfor å etablere teknikker for å utføre interaksjonsstudier i intakte celler hvor sjansen for å stabilisere protein-kompleksene og detektere dette er større. Demonstrasjonen av SN1-protein A komplekset er veldig interessant og antyder at det er en viktig måte å regulere SN1 aktivitet på. En slik regulering kan være vesentlig for normal nervecellesignalering mens en unormal regulering vil kunne føre til utvikling av hjernesykdommer.

Nei

2017
Glutamin produseres i astrogliaceller og transporteres til nerveceller for dannelse av signalstoffene glutamat og GABA. Vi utforsker mekanismer for glutaminfrigjøring fra astrogliaceller, hvordan dette reguleres og hvordan dette bidrar til nervecellesignalering og utvikling av sykdom.Glutamat og GABA er de viktigste signalstoffene i sentralnervesystemet og er essensielle for de fleste normale hjernefunksjoner. Slik nervecellesignalering er avhengig av at det er kontinuerlig tilførsel av signalstoffene glutamat og GABA. Glutamin antas å være det viktigste utgangsstoff for syntesen av glutamat og GABA. I tillegg er glutamin viktig for cellenes energistatus, pH regulering og antioksidant forsvar. Vi oppdaget og karakteriserte SN1 (Chaudhry et al., Cell, 1999). Vi har blant annet vist at SN1 uttrykkes på astroglia-cellemembraner og kan transportere glutamin begge veier og at den også innehar en kanal som tillater lekkasje av protoner. Glutamin syntetiseres i astrogliaceller og SN1 transporterer glutaminet ut til ekstracellulærvæsken hvorfra den kan opptas i nerveceller ved hjelp av andre homologe glutamintransportører. SN1 er dynamisk regulert. Vi har avslørt at protein kinase C (PKC) α og PKCγ fosforylerer SN1 på et serin i 52-posisjonen og at dette fører til internalisering av transportøren. Dette nåværende prosjektet har som mål å identifisere andre proteiner som interagerer med og regulerer SN1 aktivitet eller lokalisasjon. Vi ønsker å belyse de molekylære mekanismene som er involvert i slik regulering, og vi ønsker å studere om feil i slik regulering er involvert i utvikling av hjernesykdommer slik som demens. Prosjektet ble formelt startet 01.01.18 da en postdoc ble ansatt. Vi har allerede oppdaget to gode kandidater som potensielt interagerer med SN1. Vi har startet å gjøre co-immunpresipitasjonsforsøk for å demonstrere en eventuell interaksjon mellom de ny-oppdagede proteiner og SN1.

NEI

Vitenskapelige artikler
Hamdani EH, Popek M, Frontczak-Baniewicz M, Utheim TP, Albrecht J, Zielinska M, Chaudhry FA

Perturbation of astroglial Slc38 glutamine transporters by NH

FASEB J 2021 07;35(7):e21588.

PMID: 34169573

Deltagere
  • Olena Kondratska Postdoktorstipendiat (finansiert av denne bevilgning)
  • Padmapriya Kumar Postdoktorstipendiat (finansiert av denne bevilgning)
  • El Hassan Hamdani Prosjektdeltaker
  • Bjørnar Hassel Prosjektdeltaker
  • Torgeir Bruun Wyller Prosjektdeltaker
  • Robert Edwards Prosjektdeltaker
  • Tor Paaske Utheim Prosjektdeltaker
  • Farrukh Abbas Chaudhry Prosjektleder

eRapport er utarbeidet av Sølvi Lerfald og Reidar Thorstensen, Regionalt kompetansesenter for klinisk forskning, Helse Vest RHF, og videreutvikles av de fire RHF-ene i fellesskap, med støtte fra Helse Vest IKT

Alle henvendelser rettes til eRapport

Personvern  -  Informasjonskapsler